id	amplificationMethod	primerSequenceForward	primerReferenceLinkForward	primerSequenceReverse	primerReferenceLinkReverse	purificationMethod	consensusSequence	barcodeSequence	marker	geneticAccessionNumber
P1T.1	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.2	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.3	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.4	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.5	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.6	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.7	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.8	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.9	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.10	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT		rbcl	
P1T.11	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.12	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.13	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.14	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.15	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.16	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.17	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.18	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.19	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.20	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.21	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.22	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.23	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.24	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.25	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.26	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.27	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.28	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.29	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.30	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.31	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.32	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.33	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
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P1T.35	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.36	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.37	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.38	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.39	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.40	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.41	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.42	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.43	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.44	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.45	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.46	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.47	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.48	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.49	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.50	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.51	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.52	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.53	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.54	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.55	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.56	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.57	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.58	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.59	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.60	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.61	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.62	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.63	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.64	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.65	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.66	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.67	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.68	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.69	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.70	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.71	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.72	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.73	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.74	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.75	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.76	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.77	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.78	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.79	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.80	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.81	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.82	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.83	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.84	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.85	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.86	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.87	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.88	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.89	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.90	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.91	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.92	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.93	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.94	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.95	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.96	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.97	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.98	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.99	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.100	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.101	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.102	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.103	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.104	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.105	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.106	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.107	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.108	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.109	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.110	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.111	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.112	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.113	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.114	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.115	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.116	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.117	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.118	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.119	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.120	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.121	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.122	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.123	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.124	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.125	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.126	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.127	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.128	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.129	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.130	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.131	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.132	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.133	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.134	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.135	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.136	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.137	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.138	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.139	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.140	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.141	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.142	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.143	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1T.144	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.145	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.146	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.147	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.148	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.149	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.150	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.151	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.152	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.153	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.154	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.155	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.156	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.157	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.158	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.159	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.160	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.161	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.162	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.163	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.164	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.165	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.166	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.167	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.168	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.169	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.170	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.171	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.172	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.173	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.174	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.175	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.176	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.177	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.178	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.179	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.180	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.181	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.182	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.183	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.184	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.185	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.186	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.187	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.188	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.189	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.190	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.191	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.192	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.193	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.194	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.195	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.196	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.197	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.198	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.199	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.200	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.201	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.202	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.203	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.204	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.205	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.206	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.207	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.208	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.209	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.210	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.211	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.212	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.213	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.214	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.215	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.216	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.217	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.218	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.219	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.220	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.221	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.222	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.223	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.224	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.225	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.226	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.227	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.228	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.229	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.230	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.231	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.232	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.233	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.234	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.235	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.236	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.237	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.238	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.239	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.240	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.241	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.242	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.243	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.244	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.245	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.246	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.247	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.248	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.249	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.250	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.251	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.252	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.253	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.254	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.255	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.256	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.257	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.258	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.259	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.260	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.261	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.262	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.263	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.264	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.265	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.266	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.267	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.268	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.269	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.270	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.271	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.272	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.273	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.274	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.275	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.276	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.277	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.278	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.279	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.280	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.281	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.282	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.283	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.284	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.285	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.286	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.287	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.288	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.289	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.290	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.291	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.292	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.293	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.294	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.295	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.296	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.297	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.298	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.299	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.300	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.301	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.302	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.303	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.304	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.305	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.306	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.307	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.308	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.309	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.310	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.311	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.312	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2T.313	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.314	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.315	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.316	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.317	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.318	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.319	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.320	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.321	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.322	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.323	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.324	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.325	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.326	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.327	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.328	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.329	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.330	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.331	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.332	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.333	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.334	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.335	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.336	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.337	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.338	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.339	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.340	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.341	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.342	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.343	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.344	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.345	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.346	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.347	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.348	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.349	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.350	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.351	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.352	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.353	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.354	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.355	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.356	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.357	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.358	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.359	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.360	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.361	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.362	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.363	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.364	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.365	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.366	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.367	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.368	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.369	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.370	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.371	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.372	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.373	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.374	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.375	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.376	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.377	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.378	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.379	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.380	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.381	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.382	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.383	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.384	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.385	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.386	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.387	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.388	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.389	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.390	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.391	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.392	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.393	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.394	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.395	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.396	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.397	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.398	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.399	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.400	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.401	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.402	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.403	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.404	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.405	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.406	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.407	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.408	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.409	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.410	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.411	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.412	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.413	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.414	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.415	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.416	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.417	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.418	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.419	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.420	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.421	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.422	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.423	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.424	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.425	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.426	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.427	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.428	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.429	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.430	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.431	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.432	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.433	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.434	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.435	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.436	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.437	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.438	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.439	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.440	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.441	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.442	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.443	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.444	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.445	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.446	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.447	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.448	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.449	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.450	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.451	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.452	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.453	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.454	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3T.455	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.456	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.457	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.458	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.459	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.460	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.461	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.462	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.463	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.464	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.465	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.466	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.467	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.468	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.469	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.470	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.471	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.472	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.473	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.474	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.475	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.476	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.477	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.478	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.479	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.480	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.481	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.482	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.483	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.484	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.485	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.486	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.487	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.488	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.489	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.490	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.491	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.492	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.493	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.494	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.495	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.496	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.497	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.498	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.499	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.500	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.501	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.502	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.503	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.504	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.505	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.506	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.507	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.508	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.509	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.510	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.511	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.512	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.513	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.514	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.515	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.516	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.517	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.518	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.519	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.520	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.521	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.522	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.523	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.524	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.525	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.526	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.527	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.528	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.529	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.530	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.531	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.532	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.533	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.534	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.535	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.536	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.537	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.538	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.539	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.540	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.541	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.542	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.543	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.544	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.545	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.546	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.547	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.548	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.549	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.550	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.551	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.552	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.553	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.554	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.555	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.556	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.557	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.558	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.559	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.560	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.561	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.562	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.563	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.564	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.565	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.566	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.567	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.568	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.569	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.570	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.571	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.572	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.573	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.574	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.575	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.576	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4T.577	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.578	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.579	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.580	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.581	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.582	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.583	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.584	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.585	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.586	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.587	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.588	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.589	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.590	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.591	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.592	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.593	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.594	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.595	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.596	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.597	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.598	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.599	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.600	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.601	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.602	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.603	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.604	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.605	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.606	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.607	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.608	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.609	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.610	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.611	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.612	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.613	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.614	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.615	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.616	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.617	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.618	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.619	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.620	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.621	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.622	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.623	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.624	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.625	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.626	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.627	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.628	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.629	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.630	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.631	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.632	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.633	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.634	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.635	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.636	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.637	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.638	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.639	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.640	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.641	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.642	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.643	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.644	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.645	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.646	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.647	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.648	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.649	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.650	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.651	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.652	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.653	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.654	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.655	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.656	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.657	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.658	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.659	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.660	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.661	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.662	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.663	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.664	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.665	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.666	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.667	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.668	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.669	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.670	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.671	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.672	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.673	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.674	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.675	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.676	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.677	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.678	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.679	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.680	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.681	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.682	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.683	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.684	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.685	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.686	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.687	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.688	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.689	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.690	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.691	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.692	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.693	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.694	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.695	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.696	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.697	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.698	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.699	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.700	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.701	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.702	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.703	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.704	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.705	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.706	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.707	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.708	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.709	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.710	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.711	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.712	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.713	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.714	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.715	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.716	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.717	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.718	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.719	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.720	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.721	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.722	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.723	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.724	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.725	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.726	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5T.727	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.728	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.729	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.730	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.731	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.732	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.733	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.734	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.735	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.736	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.737	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.738	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.739	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.740	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.741	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.742	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.743	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.744	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.745	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.746	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.747	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.748	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.749	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.750	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.751	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.752	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.753	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.754	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.755	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.756	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.757	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.758	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.759	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.760	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.761	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.762	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.763	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.764	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.765	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.766	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.767	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.768	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.769	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.770	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.771	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.772	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.773	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.774	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.775	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.776	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.777	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.778	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.779	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.780	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.781	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.782	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.783	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.784	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.785	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.786	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.787	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.788	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.789	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.790	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.791	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.792	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.793	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.794	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.795	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.796	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.797	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.798	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.799	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.800	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.801	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.802	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.803	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.804	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.805	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.806	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.807	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.808	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.809	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.810	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.811	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.812	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.813	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.814	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.815	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.816	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.817	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.818	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.819	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.820	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.821	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.822	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.823	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.824	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.825	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.826	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.827	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.828	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.829	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.830	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.831	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.832	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.833	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.834	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.835	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.836	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.837	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.838	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P1Y.839	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.840	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.841	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.842	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.843	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.844	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.845	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.846	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.847	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.848	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.849	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.850	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.851	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.852	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.853	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.854	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.855	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.856	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.857	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.858	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.859	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.860	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.861	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.862	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.863	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.864	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.865	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.866	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.867	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.868	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.869	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.870	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.871	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.872	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.873	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.874	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.875	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.876	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.877	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.878	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.879	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.880	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.881	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.882	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.883	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.884	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P2Y.885	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.886	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.887	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.888	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.889	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.890	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.891	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.892	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.893	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.894	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.895	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.896	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.897	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.898	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.899	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.900	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.901	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.902	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.903	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.904	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.905	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.906	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.907	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.908	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.909	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.910	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.911	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.912	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.913	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.914	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.915	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.916	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.917	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.918	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.919	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.920	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.921	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.922	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.923	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.924	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.925	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.926	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.927	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.928	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.929	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.930	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.931	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.932	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.933	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.934	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.935	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.936	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.937	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.938	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.939	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.940	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P3Y.941	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.942	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.943	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.944	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.945	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.946	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.947	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.948	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.949	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.950	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.951	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.952	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.953	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.954	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.955	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.956	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.957	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.958	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.959	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.960	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.961	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.962	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.963	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.964	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.965	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.966	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.967	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.968	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.969	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.970	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.971	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.972	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.973	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.974	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.975	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.976	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.977	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.978	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.979	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.980	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.981	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.982	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.983	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.984	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.985	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.986	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.987	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.988	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.989	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.990	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.991	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.992	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.993	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.994	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.995	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.996	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.997	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.998	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.999	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1000	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1001	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1002	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1003	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1004	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1005	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1006	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1007	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1008	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1009	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1010	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1011	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1012	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1013	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1014	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1015	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1016	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1017	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1018	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1019	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1020	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1021	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1022	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1023	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1024	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1025	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1026	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1027	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1028	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1029	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1030	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1031	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1032	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1033	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1034	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1035	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1036	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1037	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1038	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1039	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1040	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1041	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1042	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1043	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1044	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1045	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1046	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1047	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1048	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1049	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1050	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1051	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1052	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1053	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1054	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1055	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1056	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1057	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1058	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1059	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1060	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1061	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1062	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1063	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1064	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1065	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1066	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1067	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1068	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1069	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1070	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1071	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1072	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1073	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P4Y.1074	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1075	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1076	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1077	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1078	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1079	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1080	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1081	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1082	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1083	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1084	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1085	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1086	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1087	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1088	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1089	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1090	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1091	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1092	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1093	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1094	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1095	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1096	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1097	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1098	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1099	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1100	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1101	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1102	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1103	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1104	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1105	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1106	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1107	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1108	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1109	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1110	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1111	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1112	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1113	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1114	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1115	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1116	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1117	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1118	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1119	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1120	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1121	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1122	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1123	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1124	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1125	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1126	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1127	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1128	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1129	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1130	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1131	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1132	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1133	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1134	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1135	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1136	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
P5Y.1137	Vasselon et al., (2017), se amplificaron regiones del gen de la rbcl (marcador cloroplástico)	CCTTCTAATTTACCWACWACTG	CCTTCTAATTTACCWACAACAG		https://doi.org/10.1038/srep12924	Las muestras fueron homogenizadas y posteriormente, se colectó 10 ml en tubos cónicos. Para concentrar la muestra se centrifugó a 15000 rpm por 10 minutos, el sobrenadante fue descartado. El pellet que se formó se resuspendió en 600?L del Lysis Buffer, volumen empleado para la extracción del DNA siguiendo las instrucciones del protocolo de extracción PureLink Microbiome (Thermo Scientific, USA), modificando la temperatura de incubación a 80°C por 15 minutos. El DNA obtenido fue diluido en 100 ?L Elution Buffer.	TACTTT			
